University of surrey veterinary medicine

Universidad Veterinaria de São Paulo

Comparar el rendimiento de las pruebas de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y de ensayo inmunoenzimático (ELISA) para el diagnóstico de Echinococcus granulosus en heces de perro entre los laboratorios nacionales de referencia de Argentina, Chile, Perú y Uruguay.

Los laboratorios nacionales afiliados al Ministerio de Salud/Agricultura de cada país intercambiaron paneles de 10 muestras positivas/negativas obtenidas de sus programas nacionales regulares de vigilancia en noviembre de 2015 – noviembre de 2016. Todos los laboratorios aplicaron la PCR; dos también aplicaron técnicas de ELISA. Se determinó la sensibilidad y la especificidad para cada laboratorio y se evaluó la concordancia de los resultados entre los laboratorios mediante el coeficiente Kappa de Cohen.

En este estudio se demostró la escasa concordancia (3 de 10 comparaciones emparejadas tenían valores de Kappa > 0,4), la baja sensibilidad y especificidad de todos los laboratorios y el escaso rendimiento de ambas técnicas en la detección de E. granulosus en las heces caninas. Una comparación a posteriori de los protocolos de prueba de los laboratorios mostró una heterogeneidad sustancial que podría explicar en parte la escasa concordancia de los resultados.

Fmvz usp

En este estudio se describe la patología de la infección por Leishmania infantum en lepóridos silvestres infectados de forma natural y se compara el diagnóstico de la infección mediante histopatología, ensayo de anticuerpos fluorescentes directos (DFA), prueba de inmunofluorescencia de anticuerpos (IFAT) y PCR cuantitativa en tiempo real (qPCR). Se analizaron tejidos de 52 conejos europeos (Oryctolagus cuniculus) y 7 liebres ibéricas (Lepus granatensis) de la Comunidad de Madrid (España). Nuestros resultados muestran que la infección por L. infantum se asocia a lesiones histopatológicas mínimas y que los amastigotes de L. infantum pueden detectarse mediante el ensayo DFA en todos los tipos de tejidos analizados, incluida la piel. Estos resultados fueron confirmados por qPCR en tejidos frescos congelados en el 13% de los conejos y el 100% de las liebres. Sin embargo, el ADN de L. infantum no pudo ser detectado por qPCR en tejidos embebidos en parafina obtenidos por microdisección de captura láser. El uso del ensayo DFA para diagnosticar la infección por L. infantum puede proporcionar más información sobre esta enfermedad en animales salvajes y puede permitir la localización tisular precisa de L. infantum, guiando así las pruebas de seguimiento con una qPCR más precisa.

Escuelas de veterinaria en Brasil

Alves-Pinto, H. 2013. Biología e taxonomía de trematódeos transmitidos por moluscos dulciaquícolas na Represa da Pampulha, Belo Horizonte, Minas Gerais, Brasil. Tesis de Doctorado en Parasitología. Universidade Federal de Minas Gerais, Belo Horizonte, Brasil.

Basch P.F., DiConza J.J. & Johnson B.E. 1973. Trematodos estrigiformes (Cotylurus lutzi) cultivados in vitro: Producción de huevos normales con continuación del ciclo vital. J. Parasitol. 59(2): 319-322. DOI: 10.2307/3278824

Blasco-Costa, I. & Locke, S. A. 2017. Historia de la vida, sistemática y evolución de los Diplostomoidea Poirier, 1886: Avances, promesas y retos que surgen de los estudios moleculares. Adv. Parasitol. 98:167-225. DOI: doi.org/10.1016/bs.apar.2017.05.001

Born-Torrijos, A., Poulin, R., Pérez-del-Olmo, A., Culurgioni, J., Raga, J. A. & Holzer, A. S. 2016. Un ciclo vital optimizado de trematodos multihospedadores: los descartes de las pesquerías mejoran la transmisión trófica del parásito a las aves carroñeras. Int. J. Parasitol. 46(11): 745-753. DOI: doi.org/10.1016/j.ijpara.2016.06.005

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LATTES >>ANDRÉ LUIZ RODRIGUES ROQUEGraduado en Medicina Veterinaria por la Universidad Federal Rural de Río de Janeiro (2002), una maestría (2005) y un doctorado (2009) en Biología Parasitaria por la Fundación Oswaldo Cruz. André es Tecnólogo en Salud Pública y Jefe Suplente del Laboratorio de Biología de Tripanosomátidos (IOC/FIOCRUZ). Es Joven Científico de Nuestro Estado por la FAPERJ desde 2013 y Productor del CNPq. Actualmente es Coordinador Adjunto del Programa de Postgrado en Biología Parasitaria (CAPES 7), donde actúa como asesor permanente. Actúa como Editor Académico de Plos One y como revisor de más de 20 revistas científicas. Tiene experiencia en el área de Parasitología y Enfermedades parasitarias de los animales, con énfasis en el estudio de reservorios silvestres de agentes zoonóticos, actuando principalmente en los siguientes temas Interacción tripanosomátidos-hospedadores naturales; Manejo de pequeños mamíferos silvestres, Trypanosoma cruzi, Leishmania sp. y caracterización de tripanosomátidos.

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